本检测系统阐述了信号通路阻断实验的核心技术体系。文章详细介绍了该实验涵盖的关键检测项目、广泛的检测范围、主流的检测方法以及必需的仪器设备,旨在为研究人员设计并执行相关实验提供一份全面且结构化的技术指南。
核心优势
检测中心实验室配备国内外的前沿分析检测设备,检测报告获得CNAS、CMA双重认证,国际互认。
检测流程
检测项目
磷酸化蛋白水平:检测信号通路中关键蛋白(如激酶、转录因子)的磷酸化状态,是评估通路活性的直接指标。
总蛋白表达量:测定目标蛋白的总表达水平,用于区分磷酸化变化是由于修饰增强还是蛋白总量改变所致。
下游基因转录水平:通过检测通路下游靶基因的mRNA表达量,评估信号传导的最终转录输出效应。
蛋白质-蛋白质相互作用:验证信号分子之间的结合是否被阻断剂破坏,如共免疫沉淀检测复合物形成。
激酶活性:直接测量特定激酶(如AKT, ERK)的酶活性变化,比磷酸化检测更能反映功能状态。
细胞增殖与活力:评估通路阻断对细胞生长、存活的影响,是判断阻断效果的功能性终点指标。
细胞周期分布:分析阻断后细胞周期各时相(G1, S, G2/M)的比例变化,揭示对细胞周期进程的影响。
细胞凋亡率:定量检测早期和晚期凋亡细胞比例,判断通路阻断是否诱导了程序性细胞死亡。
报告基因活性:利用构建的荧光素酶或GFP报告系统,定量测定特定转录因子(如NF-κB, STAT)的激活程度。
亚细胞定位变化:观察关键信号分子(如β-catenin, NF-κB)在细胞核与细胞质之间的转位情况。
检测范围
生长因子通路:如EGFR/Ras/MAPK通路、PI3K/AKT/mTOR通路,涉及细胞增殖、分化和存活。
免疫与炎症通路:如JAK/STAT通路、NF-κB通路、Toll样受体通路,调控免疫应答和炎症因子产生。
细胞应激与凋亡通路:如p53通路、死亡受体通路、内质网应激通路,响应DNA损伤和生存压力。
发育与形态发生通路:如Wnt/β-catenin通路、Hedgehog通路、Notch通路,决定细胞命运和组织发育。
GPCR相关信号通路:如cAMP/PKA通路、Ca2+/PKC通路,介导多种激素和神经递质的胞外信号。
细胞代谢通路:如AMPK通路、HIF-1α通路,感知并调节细胞的能量和营养状态。
细胞粘附与迁移通路:如整合素/FAK通路、Rho GTPase通路,影响细胞运动、侵袭和转移。
DNA损伤修复通路:如ATM/ATR-Chk通路,监测并修复基因组损伤,维持遗传稳定性。
自噬相关通路:如JianCeK1复合物调控通路,控制细胞自噬流的启动和进程。
表观遗传调控通路:如组蛋白修饰酶相关通路,通过改变染色质状态影响基因表达。
检测方法
蛋白质免疫印迹:最经典的方法,利用特异性抗体检测目标蛋白的磷酸化、表达及剪切情况。
酶联免疫吸附试验:用于定量检测细胞培养上清或裂解液中特定磷酸化蛋白或细胞因子的浓度。
免疫荧光/组织化学:在细胞或组织原位可视化目标蛋白的表达定位与丰度变化。
流式细胞术:可对大量单个细胞进行多参数分析,如磷酸化流式检测胞内信号、细胞周期和凋亡。
实时定量PCR:精确测定信号通路下游靶基因mRNA水平的动态变化,灵敏度高。
报告基因检测:将含有特定反应元件的报告质粒转染入细胞,通过化学发光或荧光读数量化通路活性。
免疫共沉淀与Pull-down:用于验证阻断剂是否影响了信号通路中蛋白质之间的特异性相互作用。
激酶活性检测试剂盒:提供特定底物,通过比色法或荧光法直接、定量地测量激酶活性。
高通量测序:如RNA-seq,在全基因组范围无偏倚地分析信号通路阻断后的转录组变化。
质谱分析:基于质谱的磷酸化蛋白质组学可全局性发现和定量信号网络中的磷酸化事件变化。
检测仪器设备
蛋白电泳及转印系统:用于Western Blot实验中的SDS-PAGE凝胶电泳和蛋白条带转印至膜上。
化学发光成像仪:捕获Western Blot或ELISA等实验中化学发光信号,进行定性和半定量分析。
酶标仪:多功能微孔板阅读器,用于读取ELISA、报告基因实验及细胞活力检测的光吸收、荧光或化学发光信号。
流式细胞仪:对经荧光标记的单个细胞进行快速、多参数的定量分析和分选,是检测胞内信号分子的利器。
实时荧光定量PCR仪:在PCR扩增过程中实时监测荧光信号,实现对特定mRNA转录本的绝对或相对定量。
倒置荧光显微镜:用于活细胞或固定细胞的荧光成像,观察荧光报告基因表达或免疫荧光染色结果。
共聚焦显微镜:提供高分辨率、高对比度的光学切片图像,精确分析蛋白质的亚细胞定位及共定位。
细胞培养箱:提供恒定的温度、湿度和CO2浓度环境,是进行细胞处理、药物阻断和培养的基础设备。
超速/高速离心机:用于制备细胞裂解液、分离亚细胞组分以及进行免疫共沉淀等实验步骤。
液相色谱-质谱联用仪:进行大规模磷酸化蛋白质组学分析的核心设备,用于鉴定和定量磷酸化肽段。
