本检测详细介绍了蛋白印迹杂交分析(Western Blot)这一核心分子生物学技术。文章系统阐述了该技术的检测项目、应用范围、标准操作流程以及所需的关键仪器设备,旨在为研究人员提供一份全面、实用的技术指南,涵盖从样本准备到结果分析的完整环节。

核心优势

检测中心实验室配备国内外的前沿分析检测设备,检测报告获得CNAS、CMA双重认证,国际互认。

检测流程

1 需求沟通
2 方案定制
3 取样/送检
4 实验检测
5 数据分析
6 出具报告

检测项目

目标蛋白特异性检测:利用特异性抗体验证样本中是否存在目标蛋白,是Western Blot最核心的应用。

蛋白相对表达量分析:通过比较不同样本间目标蛋白的信号强度,半定量分析其表达水平的差异。

蛋白分子量确定:通过与已知分子量的蛋白标准品(Marker)对比,估算目标蛋白的表观分子量。

蛋白翻译后修饰分析:使用识别特定修饰(如磷酸化、乙酰化、泛素化)的抗体,检测蛋白的修饰状态和水平。

蛋白异构体鉴定:区分同一基因产生的不同剪接变体或不同修饰形式导致的蛋白条带差异。

抗体特异性验证:作为关键实验,用于验证新制备或购入的抗体的特异性和有效性。

信号通路激活状态评估:通过检测信号通路中关键蛋白(如激酶)及其磷酸化形式,评估通路活性。

蛋白相互作用间接证据:通过检测共沉淀或共纯化样品中的伴侣蛋白,为蛋白相互作用提供佐证。

疾病生物标志物筛选:在疾病与正常组织中筛选差异表达的蛋白,寻找潜在的诊断或预后标志物。

转基因或基因敲除效果验证:在分子水平确认外源基因是否成功表达或内源基因是否被有效敲低/敲除。

检测范围

细胞裂解液:来自培养的哺乳动物细胞、昆虫细胞、细菌或酵母等,是最常见的检测样本类型。

组织分浆液:从动物或临床手术获取的组织样本,经分浆裂解后用于分析组织特异性蛋白表达。

血清或血浆样本:用于检测可溶性蛋白、自身抗体或特定的循环生物标志物。

细胞器分离组分:如细胞核、线粒体、胞浆等亚细胞结构分离后的蛋白,用于蛋白定位研究。

免疫共沉淀产物:经过抗体捕获的蛋白复合物洗脱液,用于验证相互作用或检测复合物组分。

重组蛋白样品:验证原核或真核系统表达的重组蛋白的产量、大小和纯度。

植物提取物:适用于植物生物学研究,分析植物组织中的特定蛋白。

病毒或病原体蛋白:用于病原体检测、疫苗研发或宿主对感染应答的研究。

法医或考古样本:在特定条件下,可用于分析微量或降解样本中的特征性蛋白。

药物处理样本:研究药物、抑制剂或刺激剂处理细胞或组织后,目标蛋白表达或修饰的动态变化。

检测方法

样本制备与蛋白提取:使用裂解液破碎细胞或组织,释放总蛋白,并测定浓度以确保上样量一致。

SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳:将变性的蛋白样品根据分子量大小在凝胶中进行分离,是后续转印的基础。

半干式或湿式转印:将凝胶中分离的蛋白条带通过电场转移至固相支持膜(如PVDF膜或NC膜)上。

膜封闭:使用脱脂牛奶或BSA溶液封闭膜上的非特异性结合位点,以减少背景信号。

一抗孵育:用针对目标蛋白的特异性一抗与膜上的蛋白进行杂交结合,通常于4°C过夜。

洗涤步骤:使用含有温和去垢剂的缓冲液(如TBST)洗去未结合的一抗,降低非特异性背景。

二抗孵育:使用与一抗种属匹配且偶联了报告酶(如HRP)的二抗进行孵育,放大检测信号。

化学发光法检测:加入化学发光底物,报告酶催化底物产生光信号,通过胶片或成像系统捕获。

内参蛋白检测:使用看家蛋白(如β-actin, GAPDH)抗体检测内参,作为上样量和数据标准化的依据。

图像分析与定量:使用专业软件对条带的光密度进行定量分析,比较不同样本间的相对表达量。

检测仪器设备

垂直电泳槽:用于进行SDS-PAGE,其核心部件是玻璃板夹层,用于灌制凝胶和进行电泳分离。

电源供应器:为电泳和转印过程提供稳定、可调节的直流电压和电流。

转印装置:分为湿式转印槽和半干转印仪,用于将凝胶中的蛋白高效转移至膜上。

摇床:用于孵育和洗涤过程中的温和振荡,确保抗体或缓冲液与膜充分、均匀接触。

化学发光成像系统:核心检测设备,包含高灵敏度CCD相机和暗箱,用于捕获和记录化学发光信号。

凝胶成像系统:用于观察和记录考马斯亮蓝染色或荧光染色的凝胶图像。

分光光度计/酶标仪:用于精确测定蛋白提取液的浓度(如BCA法、Bradford法)。

微量移液器及枪头:用于精确量取和转移样品、试剂及抗体溶液。

恒温孵育箱或水浴锅:用于样本变性等需要精确控温的步骤。

分析软件:如ImageJ, Image Lab, Quantity One等,用于对捕获的图像进行条带定量和数据分析。

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